Insuficiencia renal crónica en una tigresa

  • Dr. Carlos Ouro Núñez
  • Veterinario.
  • Dra. Laura Díez Obís
  • Veterinaria.


  • Dr. Antonio Rodríguez González
  • Veterinario.
  • Hospital Veterinario El Bosque
  • Villaviciosa de Odón (Madrid)
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Resumen

La insuficiencia renal crónica es una de las patologías más frecuentes en la clínica de perro y gato. Dicha patología tiene una prevalencia muy elevada en otras especies animales y los grandes felinos no son una excepción. En el presente artículo se describe un caso clínico de insuficiencia renal crónica en un tigre; el abordaje a dicha patología es muy similar al realizado en gatos aunque el manejo y hospitalización del animal difiere significativamente. El auge en los últimos años de entidades educativas medioambientales e instituciones zoológicas privadas en nuestro país hace que la probabilidad de enfrentarnos a un caso similar en nuestra clínica diaria aumente significativamente.

Palabras Clave / Keywords

Insuficiencia renal crónica, tigre, azotemia, manejo. / chronic renal failure, tiger, azotaemia, handling.

Historia clínica:

Se atiende en el H.V. El Bosque a un tigre de Bengala (Panthera tigris tigris) hembra, de 9 años de edad y 180 Kg., no esterilizada y sin historial de vacunas conocido, por un proceso de anorexia, apatía, postración, polidipsia, poliuria, constipación y mala condición corporal (4/9) de 6 días de evolución según refiere el cuidador.

El animal es alojado en un recinto de aproximadamente 75m2 con suelo de arena y cemento, un pequeño refugio con paja como substrato y una piscina de 2,5x1,5x1m. El animal tiene acceso continuo a agua corriente y se le administra una dieta a base de carnes magras, cordero entero e hígado y corazón de ternera.

Durante la anamnesis no hay evidencias de enfermedades recientes ni exposición a fármacos, tóxicos o metales pesados.

Hematología y bioquímica sanguínea y valores de referencia

  • Dterminación
  • Resultado día 1
  • Resultado día 3
  • Valores de referencia. (*)Valores extrapolados de gato
  • RBC (106/uL)
  • 3,07
  • 3,84
  • 4.66-9.15
  • HCT (%)
  • 17,3
  • 22,5
  • 36-45
  • HGB (g/dL)
  • 5,6
  • 7,3
  • 7.8-13.8
  • MCV (fL)
  • 56,4
  • 58,6
  • 35,9-53,1*
  • MCH (pg)
  • 18,2
  • 19
  • 11,8-17,3*
  • MCHC (g/dL)
  • 32,4
  • 32,4
  • 28,1-35,8*
  • RDW (%)
  • 24
  • 26,3
  • 15,0-27,0 *
  • RETIC (%)
  • 0,1
  • 0,0
  • RETIC (K/µL)
  • 3,4
  • 0,8
  • 3,0-50,0*
  • WBC (K/µL)
  • 10,65
  • 7,51
  • 6,2-11,05
  • NEU (%)
  • 88,6
  • 27,1
  • 1,48-10,29*
  • LYM (%)
  • 10,6
  • 67,2
  • 0,92-6,88*
  • MONO (%)
  • 0,8
  • 4,3
  • 0,05-0,67*
  • EOS (%)
  • 0,0
  • 0,3
  • 0,17-1,57*
  • BASO (%)
  • 0,0
  • 1,1
  • 0-4
  • NEU (K/µL)
  • 9,43
  • 2,04
  • 1,48-10,29*
  • LYM (K/µL)
  • 1,13
  • 5,05
  • 0,92-6,88*
  • MONO (K/µL)
  • 0,09
  • 0,32
  • 0,05-0,67*
  • EOS (K/µL)
  • 0,0
  • 0,02
  • 0,17-1,57*
  • BASO (K/µL)
  • 0,0
  • 0,08
  • 0,01-0,26*
  • PLT (K/µL)
  • 223
  • 70
  • 151-600*
  • GLU (mg/dL)
  • 231
  • 74-159*
  • BUN (mg/dL)
  • >130
  • >130
  • 6,5-48,2
  • CREA (mg/dL)
  • > 13,6
  • >13,6
  • 1,6-4,6
  • PHOS (mg/dL)
  • 13,9
  • >16,1
  • 3,1-7,5*
  • Ca (mg/dL)
  • 7,7
  • 7,8-11,3*
  • TP (g/dL)
  • 8
  • 3,7-8,7
  • ALB (g/dL)
  • 3
  • 2,1-4,6
  • GLOB (g/dL)
  • 5
  • 1,6-4,1
  • ALB/GLOB
  • 0,6
  • ALT (U/L)
  • 67
  • 21,2-109,0
  • ALKP (U/L)
  • 24
  • 14-111*
  • GGT (U/L)
  • < 0
  • 0-1*
  • TBIL (mg/dL)
  • 0,4
  • 0,4-3,2
  • CHOL (mg/dL)
  • 167
  • 65-225*
  • AMYL (U/L)
  • >2500
  • 500-1500*
  • LIPA (U/L)
  • 72
  • 100-1400*
  • Na (mmol/L)
  • 153
  • 150-165*
  • K (mmol/L)
  • 3,6
  • 3.5-5.8*
  • Na/K
  • 43
  • Cl
  • 122
  • 112-129*

Caso clínico

Se realiza la exploración con el animal consciente con ayuda del cuidador, se evidencia salivación y úlceras orales, mucosas pálidas, tiempo de rellenado capilar menor de 2 segundos, deshidratación del 8%, taquicardia (120 l.p.m.), hipertensión arterial sistémica medida en la arteria caudal ventral con un valor de 180 mmHg (Dopler Hunyleigh Vettex).

Ante la sospecha de patología renal se realiza estudio radiográfico abdominal, análisis hematológico y bioquímico los días 1 y 3 de hospitalización, tira reactiva de orina, ecografía abdominal y test de leucemia e inmunodeficiencia felina con el animal bajo sedación con una reducción del 30% respecto al protocolo elegido de medetomidina 10 ug/kg y diazepam 0´2 mg/ /kg1,2,3 y atropina a dosis de 0,04 mg/kg con vistas a reducir la salivación del paciente y evitar posibles neumonías por aspiración. Se aplica una vía intravenosa en la vena cefálica con un catéter 16G.

Tras la realización de las pruebas diagnósticas se procede a la hospitalización del animal en su jaula de transporte de 1x2,75 m y a su estabilización con fluidoterapia usando una bomba de infusión.

Se procede a la reversión del agente alfa 2 agonista con atipamezol a 150 ug/kg iv).

Diagnóstico por imagen

Debido al tamaño del paciente se realizan radiografías por partes de la cavidad abdominal (Imagen 1 y 2), por el mismo motivo no fue posible realizar proyección ventrodorsal.

En el estudio radiológico se descubren ambos riñones con una gran pérdida de la superposición de ambos, márgenes irregulares y disminución del tamaño de las siluetas renales. Así mismo se apreció contenido gaseoso en gran parte del aparato gastrointestinal.

Para confirmar las lesiones renales se procedió a realizar ecografía abdominal.

El estudio ecográfico abdominal resulto ser dificultoso por la gran cantidad de gas alojado en intestino que impedía la transducción de los ecos diagnósticos y el gran tamaño del abdomen del animal; no obstante la ecografía renal reveló una pérdida de la definición corticomedular renal, dilatación de la pelvis renal y un aumento generalizado de la ecogenicidad de la corteza de forma bilateral.

Analíticas laboratoriales

1) El resultado del test FeLV/Fiv fue negativo (Imagen 4). (Laboratorio Virbac)

2) Los resultados de la hematología (Procyte Dx,) y bioquímica sanguínea (VetScan Vs2) se muestran en la Tabla 1 junto con los valores de referencia de la especie en cuestión4.

3) Tira reactiva de orina Urispec Plus TM , realizada el día 01/07/13:

  • Densidad: 1.020
  • Sangre (Ery/ μL): ++++
  • Bilirrubina: NEGATIVO
  • Urobilinógeno mg/dL (mmol/L): NEGATIVO
  • Glucosa mg/dL (mmol/L): 50 (2,8)
  • Proteínas mg/dL (g/L): Trazas
  • Nitritos: NEGATIVO
  • Cuerpos Cetónicos: NEGATIVO
  • Ph: 6

Hallazgos relevantes en la analítica sanguínea y de orina:

  • Insuficiencia Renal Grave por el aumento simultáneo de los valores de Urea, Creatinina y Fósforo, con mal pronóstico debido a que los datos empeoran a los dos días de haber instaurado el tratamiento.
  • Anemia no regenerativa: valores de Hematocrito y Reticulocitos disminuidos. El riñón produce la mayor parte de la hormona Eritropoyetina implicada en la producción de eritrocitos. Cuando una enfermedad renal está avanzada los riñones pierden la capacidad de producir esta hormona y como consecuencia aparece anemia no regenerativa.
  • Valores leucocitarios: son dispares y sus valores en tigres deben interpretarse con precaución ya que determinados factores fisiológicos como un estado de alarma/miedo u otra clase de alteraciones “emocionales” pueden tener un efecto directo sobre recuento total y diferencial de leucocitos.
  • Hiperglucemia y glucosuria leves que relacionamos con el estrés del manejo durante la toma de muestra de sangre.
  • Leve hiperglobulinemia que se atribuye al proceso inflamatorio.
  • Hiperamilasemia: presente en muchos casos de insuficiencia renal en felinos y otros animales.
  • Presencia de sangre en orina debido a la inflamación renal y al aumento de la diuresis producida tanto por la enfermedad como por el tratamiento de fluidoterapia que puede irritar las vías urinarias.

Diagnóstico

Los hallazgos en el análisis sanguíneo evidencian una clara Insuficiencia Renal Crónica Grave, diagnóstico que se ve confirmado con los síntomas y los hallazgos de las radiografías y ecografía abdominal.

Se planteó al propietario hacer una biopsia renal para tener un diagnóstico definitivo pero al no evolucionar durante su hospitalización decidió la eutanasia humanitaria y no accedió a realizar necropsia.

Tratamiento

Instauramos tratamiento para insuficiencia renal crónica siguiendo protocolos para gatos domésticos con Fluidoterapia Ringer Lactato suplementado con KCl* para tratar la acidosis metabólica y prevenir las futuras pérdidas de potasio al forzar la diuresis (*Suplementación con KCl 2M=2 mEq/ml.) Velocidad de fluidoterapia: 480 ml/h.

Antibioterapia de cobertura con Enrofloxacina (Baytril 5%) a 2,5 mg/kg IM y protector de estómago Ranitidina (10 mg/ml) a 0,5 mg/kg SC ó IV. Al haber una patología renal reducimos significativamente las dosis de los medicamentos utilizados.

El tratamiento con IECAs se forzó con dieta líquida por el buen carácter del animal (el uso de tranquilizantes benzodiacepinas es muy recomendable para la hospitalización de animales salvajes),la dietas hipoproteicas y quelantes del fósforo no fue posible debido al estado de anorexia y dificultad de manejo del paciente.

Discusión

La insuficiencia renal crónica es una enfermedad relativamente frecuente en felinos salvajes. El diagnóstico se realiza con los mismos métodos que en pequeños animales con la dificultad obvia que el manejo y tratamiento de animales salvajes supone. Este hecho disminuye enormemente el éxito del tratamiento que, como en todas las enfermedades crónicas, consiste en mantener al paciente con la mejor calidad de vida el mayor tiempo posible.

En este caso, no se pudo determinar la causa principal de la enfermedad al no acceder el propietario a realizar biopsia renal.

Según el artículo “Renal Lesions of Nondomestic Felids. K. M. Newkirk, S. J. Newman, L. A. White, B. W. Rohrbach and E. C. Ramsay” al que hacemos referencia en la bibliografía, la enfermedad renal más común hallada en el estudio de un grupo de felinos salvajes fue la NEFRITIS TUBULOINTERSTICIAL que afectaba al 51% de los animales. La patología más común hallada en tigres fue la GLOMERULONEFRITIS INTERSTICIAL LINFOCITICA que estaba presente en el 24% de los tigres examinados.

Referencias:

1. Conny Gunkel, Maud Lafortune: Part VI: Mammal Anesthesia: Felids. En Gary West, Darryl J. Heard, Nigel Caulkett (ed).Zoo Animal & Wildlife Immobilization and Anesthesia, Iowa, Blackwell Publishing, 2007, 443-456.

2. Michele Miller, D.V.M., Ph.D., Martha Weber, D.V.M., Donald Neiffer, V.M.D., Barbara Mangold, D.V.M., Deidre Fontenot, D.V.M., and Mark Stetter, D.V.M., Dipl A.C.Z.M.: Anesthetic Induction of captive tigers (Panthera tigris) using a medetomidine-ketamine combination. Journal of Zoo and Wildlife Medicine 34 (3): 307-308, 2003.

3. Thomas G. Curro, Danelle Okeson, Dawn Zimmerman, Douglas L. Armstrong and Lee G. Simmons: Xylazine-Midazolam-Ketamine versus Medetomidine-Midazolam-Ketamine Anesthesia in Captive Siberian Tigers (Panthera tigris altaica). Journal of Zoo and Wildlife Medicine. 35, 3: 320-327, 2004.

4. A.B. Shrivastav and K.P. Singh:Tigers Blood: Haematological and Biochemical Studies. En Terry E. Moschandreou (ed): Blood Cell: An Overview of Studies in Hematology, InTech, 2012; 229-242.

5. K. M. Newkirk, S. J. Newman, L. A. White, B. W. Rohrbach and E. C. Ramsay: Renal Lesions of Nondomestic Felids. Veterinary Pathology. Veterinary Pathology 000(00): 1-8, 2010

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Autores

  • Dr. Carlos Ouro Núñez
  • Veterinario.
  • Dra. Laura Díez Obís
  • Veterinaria.


  • Dr. Antonio Rodríguez González
  • Veterinario.
  • Hospital Veterinario El Bosque
  • Villaviciosa de Odón (Madrid)
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